(2)培養(yǎng)細(xì)胞(貼壁或懸?。?/div>
貼壁細(xì)胞:棄培養(yǎng)基→PBS輕柔洗滌→胰酶消化(含EDTA)→終止消化(含血清培養(yǎng)基)。
懸浮細(xì)胞:直接離心收集,避免過度離心(推薦200-300×g,5分鐘)。
(3)血液或骨髓:
紅細(xì)胞裂解:使用ACK裂解液(155 mM NH4Cl, 10 mM KHCO3, 0.1 mM EDTA)處理5-10分鐘,離心去除紅細(xì)胞碎片。
白細(xì)胞分離:Ficoll密度梯度離心法分離外周血單個(gè)核細(xì)胞(PBMC)。
2、細(xì)胞解離方法
根據(jù)樣本特性選擇機(jī)械法、酶消化法或聯(lián)合法:
(1)機(jī)械法:
研磨法:組織塊置于篩網(wǎng)(70-100 μm)上,用注射器活塞輕壓研磨,PBS沖洗收集。
吹打法:用移液器反復(fù)吹打(避免氣泡),適用較松散組織。
儀器輔助:組織解離儀程序化控制剪切力,提高一致性。
(2)酶消化法:
常用酶:
膠原酶(Collagenase I/IV):分解膠原蛋白,適用于纖維化組織。
胰蛋白酶(Trypsin):解離細(xì)胞間連接,需嚴(yán)格控制時(shí)間(通常5-15分鐘)。
中性蛋白酶(Dispase II):溫和解離上皮細(xì)胞。
混合酶(如Liberase™):商業(yè)試劑優(yōu)化酶組合,減少細(xì)胞損傷。
優(yōu)化條件:37℃水浴震蕩(5% CO2環(huán)境可增強(qiáng)效果),每10分鐘觀察解離程度。
(3)特殊處理:
DNA酶I(10-50 U/mL):消化釋放的DNA,減少細(xì)胞粘連。
鈣螯合劑(EDTA/EGTA):破壞鈣依賴性細(xì)胞連接,常與胰酶聯(lián)用。
3、細(xì)胞純化與過濾
離心洗滌:200-300×g離心5分鐘,重復(fù)2-3次去除酶和碎片。
梯度離心:Percoll或Ficoll分離特定密度細(xì)胞(如去除死細(xì)胞)。
過濾:依次通過100 μm、70 μm、40 μm細(xì)胞篩,去除團(tuán)塊(過濾前用PBS潤濕篩網(wǎng)減少細(xì)胞損失)。
4、細(xì)胞重懸與計(jì)數(shù)
緩沖液選擇:根據(jù)下游應(yīng)用選擇:
PBS:通用型,但缺乏營養(yǎng),不宜久存。
培養(yǎng)基(如RPMI 1640):含營養(yǎng)物質(zhì),適合短期保存。
專用緩沖液(如1×PBS + 0.04% BSA):減少細(xì)胞吸附。
活性檢測(cè):臺(tái)盼藍(lán)染色(活細(xì)胞拒染),活率需>85%(單細(xì)胞測(cè)序要求>90%)。
濃度調(diào)整:稀釋至目標(biāo)濃度(如流式:1×10?/mL;10x Genomics:700-1200細(xì)胞/μL)。
二、關(guān)鍵注意事項(xiàng)
1、溫度與時(shí)間控制:
酶解過程需嚴(yán)格計(jì)時(shí),避免過度消化導(dǎo)致細(xì)胞膜損傷。
全程低溫操作(冰上處理)可降低酶活,減少細(xì)胞死亡。
2、避免細(xì)胞結(jié)團(tuán):
使用不含Ca²?/Mg²?的緩沖液。
添加0.02% DNA酶I處理粘性DNA。
輕柔吹打時(shí)沿管壁緩慢操作,避免剪切力損傷。
3、特殊樣本處理:
腫瘤組織:可能含大量壞死區(qū),需優(yōu)先剔除;部分癌組織需延長(zhǎng)酶解至1-2小時(shí)。
神經(jīng)元/原代細(xì)胞:對(duì)機(jī)械力敏感,建議低濃度酶(如0.25%胰酶)+短時(shí)消化。
植物細(xì)胞:需額外用纖維素酶和果膠酶處理細(xì)胞壁。
4、污染防控:
操作全程無菌(超凈臺(tái)、抗生素添加)。
紅細(xì)胞裂解后需充分洗滌,避免殘留裂解液抑制后續(xù)反應(yīng)。
三、常見問題與解決方案
四、質(zhì)量評(píng)估標(biāo)準(zhǔn)
形態(tài)觀察:顯微鏡下細(xì)胞呈圓形,邊緣清晰,無大量碎片。
活率檢測(cè):臺(tái)盼藍(lán)染色活細(xì)胞占比>85%。
聚集度檢測(cè):流式細(xì)胞儀前向散射(FSC)與側(cè)向散射(SSC)圖呈單細(xì)胞分布,無顯著聚團(tuán)信號(hào)。
功能性驗(yàn)證:下游實(shí)驗(yàn)(如流式分選、單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組)成功率達(dá)標(biāo)。
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