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哺乳動(dòng)物組織或細(xì)胞原代培養(yǎng)!
小楊 / 2019-10-10 08:31:58


一、實(shí)驗(yàn)器材

1.儀器

倒置顯微鏡,CO2培養(yǎng)箱,普通冰箱,超凈工作臺(tái),低速冷凍離心機(jī).顯微數(shù)碼攝影系統(tǒng),孵蛋器。

2.材料與試劑

(1)非無菌材料酒精棉球,離心管架,血細(xì)胞計(jì)數(shù)板.記號(hào)筆。

(2)無菌材料和試劑 輔料鑷,眼科鑷,眼科手術(shù)剪,一次性培養(yǎng)皿,6孔細(xì)胞培養(yǎng)板,15m1離心管,長(zhǎng)絲滴管,10ml刻度移液管,0.25%胰蛋白酶溶液.含500u/ml硫酸慶大霉素的Hank’s液,10%Bs—DMEM培養(yǎng)液,lmol/L HCl溶液。

(3)組織細(xì)胞材料孵化10d的雞胚蛋。

二、操作步驟

1.消化法培養(yǎng)——原代細(xì)胞培養(yǎng)

(1)取材取孵化lOd的雞胚蛋,75%酒精棉球擦拭蛋殼.大頭朝上平穩(wěn)立放于離心管架上。用輔料鑷剝開頂部的部分蛋殼,換一把眼科鑷挑破血囊膜,小心取出雞胚,放于無菌培養(yǎng)皿內(nèi),用手術(shù)剪除去頭部,然后用彎頭眼科捏夾起腹部皮膚,剪開腹腔和胸前,去除內(nèi)臟。

(2)漂洗和剪切將胚體用鑷子夾取,用含500U/ml硫酸慶大霉素的Hank’s液淋洗3遍以去除血污(含紅細(xì)胞等血液細(xì)胞),轉(zhuǎn)移到無菌培養(yǎng)皿內(nèi),用手術(shù)剪剪成lmm3的小塊。

(3)消化加入無菌O.25%胰蛋白酶溶液使組織塊浸沒,放37℃培養(yǎng)箱保溫10~20min,期間每3~5min觀察、振搖1次,使組織松散。若觀察到組織塊顯白色時(shí),取到超凈工作臺(tái)內(nèi),無菌操作用長(zhǎng)絲滴管反復(fù)吹打組織塊。添加3~5ml完全培養(yǎng)液,換一支長(zhǎng)絲滴管反復(fù)吹打,將細(xì)胞懸液通過100目不銹鋼篩網(wǎng),收集到另一個(gè)無菌培養(yǎng)皿內(nèi)·換另一支長(zhǎng)絲滴管,收集細(xì)胞懸液到無菌15ml外螺旋蓋離心管內(nèi)。

(4)離心與計(jì)數(shù)1000r/min 6min離心,無菌操作下小心傾倒去除上清。然后用彈指法使沉淀松散,添加5~10ml完全培養(yǎng)液,用長(zhǎng)絲滴管小心混勻。用微量移液器取細(xì)胞懸液到計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),每次2個(gè)計(jì)數(shù)窗的讀數(shù)應(yīng)接近,取平均值為本次讀數(shù)的細(xì)胞密度,連續(xù)2次的讀數(shù)相近時(shí)取均值代表該單細(xì)胞懸液的細(xì)胞密度。

(5)接種與培養(yǎng) 用完全培養(yǎng)液調(diào)整細(xì)胞密度為1×105/ml,接種到6孔細(xì)胞培養(yǎng)板內(nèi),接種2孔。

標(biāo)注組織細(xì)胞名稱、班級(jí)組號(hào)、接種日期等信息。

靜置后,在倒置顯微鏡下觀察孔內(nèi)細(xì)胞狀況和形態(tài),拍攝數(shù)碼照片。放37℃5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

(6)觀察記錄和換液每天觀察,針對(duì)有代表性的視場(chǎng),拍攝數(shù)碼照片。記錄內(nèi)容包括:觀察時(shí)間(培養(yǎng)時(shí)間)、細(xì)胞形態(tài)、貼壁情形、染菌狀況、培養(yǎng)液顏色。

在成纖維細(xì)胞形成單層以前.需要每3~4天更換一次新鮮培養(yǎng)液。形成細(xì)胞單層,匯合度接近90%時(shí)即終止培養(yǎng),整理實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)。

2.組織塊培養(yǎng)——組織培養(yǎng)

(1)取材取孵化。lOd的雞胚蛋,75%酒精棉球擦拭蛋殼,大頭朝上平穩(wěn)立放于離心管架上。用輔料鑷剝開頂部的部分蛋殼,換一把眼科鑷挑破血囊膜,小心取出雞胚,放于無菌培養(yǎng)皿內(nèi),用手術(shù)剪除去頭部,然后用彎頭眼科捏夾起腹部皮膚,剪開腹腔和胸前·去瞎內(nèi)臟。

(2)漂洗和剪切 將胚體鑷子夾取,用含500U/ml硫酸慶大霉素的Hank’s液淋洗3童以去除血污(含紅細(xì)胞等血液細(xì)胞),轉(zhuǎn)移到無菌培養(yǎng)皿內(nèi),用手術(shù)剪剪成1rrim。的小塊。

(3)離心1000r/min離心6min,無菌操作下小心傾倒去除上清。然后用彈指法使瓶淀松散,添加5~10ml完全培養(yǎng)液,用長(zhǎng)絲滴管小心混勻。離心操作重復(fù)1次。

(4)接種與培養(yǎng)添加新鮮完全培養(yǎng)液.使組織塊浸沒。用長(zhǎng)絲滴管小心取組織塊懸薦液,按3--5mm間隔排布組織塊液滴,置于6孔細(xì)胞培養(yǎng)板內(nèi),接種2孔。小心操作,使每個(gè)小液滴僅含1個(gè)組織塊,可用微量移液器移除多余液體。

標(biāo)注組織細(xì)胞名稱、班級(jí)組號(hào)、接種日期等信息。

針對(duì)有代表性的顯微視場(chǎng),拍攝數(shù)碼照片。放37℃ 5%CO2培養(yǎng)箱靜置培養(yǎng)。

(5)觀察記錄和換液培養(yǎng)16~24h,每孔添加新鮮完全培養(yǎng)液2.5~3.0ml。逐天觀察培養(yǎng)孔。針對(duì)有代表性的顯微視場(chǎng),拍攝數(shù)碼照片。記錄內(nèi)容包括:觀察時(shí)間(培養(yǎng)時(shí)間)、細(xì)胞形態(tài)、貼壁情形、染菌狀況、培養(yǎng)液顏色。

在成纖維細(xì)胞形成單層以前,需要每3-4天更換一次新鮮培養(yǎng)液。形成細(xì)胞單層,匯合度接近90%時(shí)即終止培養(yǎng),整理實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)。

三、注意事項(xiàng)

1.自取材開始,保持所有組織細(xì)胞處于無菌條件,細(xì)胞計(jì)數(shù)可在有菌環(huán)境中進(jìn)行。

2.75%酒精泡消毒的時(shí)間不宜過長(zhǎng),以免酒精從口和肛門浸入雞胚體內(nèi)。

3.待到組織塊周圍長(zhǎng)出單細(xì)胞層后將組織塊剔除,便可收獲細(xì)胞或進(jìn)行傳代培養(yǎng)。

4.胰蛋白酶消化的時(shí)間長(zhǎng)短與組織細(xì)胞的幼嫩程度、數(shù)量以及酶的活力等因素密切相關(guān),另外在消化過程中應(yīng)密切觀察,及時(shí)吹打,避免消化過度。

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